Revista de Ciencias Biológicas y de la Salud http://biotecnia.unison.mx
Universidad de Sonora
ISSN: 1665-1456
Study of chemical changes in shrimp (Litopeneus vanamei) and grasshopper (Sphenarium purpurascens) exoskeletons microsilages during fermentation in solid medium
1 Instituto de Agroingeniería, Universidad del Papaloapan Campus Loma Bonita. C.P. 68400. Av. Ferro-carril s/n, CD. Universitaria, Loma Bonita, Oax., México.
2 Universidad Tecnológica de Tehuacán. C.P. 75859. Prolongación de 1 sur 1101, San Pablo Tepetzingo, Tehuacán, Puebla, México.
La fermentación en medio sólido es una técnica utilizada para la producción de quitina, pigmentos, proteínas y lípi- dos. En el presente trabajo se evaluaron los cambios en la composición química y microbiológica en micro ensilados de exoesqueletos de camarón (Litopeneus vanamei) y chapulín (Sphenarium purpurascens) fermentados con un inoculo comercial de Lactobacillus plantarum AVG-112. Se determinó la cantidad de melaza para la fermentación, la composición proximal y la cuenta microbiológica de los ensilados. Los desechos se mezclaron con melaza de caña de azúcar como fuente de carbono y se inoculó usando una cepa comercial (Lactobacillus plantarum AVG-112). A los 5 d de fermentación ambos ensilados presentaron características físicas y quími- cas aceptables. Los coliformes totales, mohos y levaduras no estuvieron presentes siendo inhibidos por el proceso de ensilaje. Concluimos que la fermentación en medio sólido tiene características adecuadas para su utilización como suplemento en alimentos para organismos acuáticos.
Fermentation in a solid medium is a technique used for the production of chitin, pigments, proteins and lipids. In the present work, changes in the chemical and microbiological composition were evaluated in micro silages of shrimp (Lito- peneus vanamei) and grasshopper (Sphenarium purpuras- cens) exoskeletons, fermented with a commercial inoculum of Lactobacillus plantarum AVG-112. The amount of molasses for fermentation, proximal composition and microbiological count of the silages, were determined. The waste was mixed with sugarcane molasses as a carbon source and inoculated using a commercial strain (Lactobacillus plantarum AVG-112). After 5 days of fermentation, both silages presented accep- table physical and chemical characteristics. Total coliforms, molds and yeasts were not present and were inhibited by the ensiling process. We concluded that fermentation in a
Volumen XXVI
DOI: 10.18633/biotecnia.v26.1976
solid medium has suitable characteristics for use as a food supplement for aquatic organisms.
Los desechos de camarón como subproductos, por lo general son considerados basura en México y su incorrecta disposición genera daños ambientales. No obstante, muchos reportes señalan que son una fuente importante de com- puestos de interés industrial, entre ellos la quitina y el qui- tosano, ampliamente estudiados en distintas áreas, incluida la de salud, debido a los efectos benéficos que les confieren. De acuerdo con los datos de la Comisión Nacional de Pesca y Acuacultura (CONAPESCA), durante el periodo 2020-2021 se reportó una captura de 249 mil 958 ton de camarón. Por otro lado, el chapulín (Sphenarium purpurascens Ch.), es un alimento habitual en algunas regiones de México. Se trata de saltamontes (Ortoptera), que los mexicanos fríen y comen con sal y limón. En Oaxaca se publicitan en los mejores hoteles y restaurantes como una delicia típica de la región. El chapulín tiene un alto contenido de proteínas de acuer- do con lo reportado por Torruco et al. (2019); aunque no se considera un desecho, el chapulín tiene una vida de anaquel de 3 a 5 días, y por ello, algunos comerciantes y productores locales se ven en la necesidad de tirarlo. Esto ocasiona el desperdicio de proteína de alta calidad y un aumento de la contaminación ambiental. Dentro de los aprovechamien- tos más sustentables de estos desechos se encuentra la producción de ensilados de desechos de crustáceos para la elaboración de alimentos para aves, ganado y peces, mediante la fermentación en estado sólido (FES) (Nigam et al., 2000). El objetivo del proceso es el aumento parcial del contenido proteico de los alimentos, mejorando además las posibilidades de conservación, cambiando sus características fisicoquímicas y sensoriales. Los sustratos utilizados deben proporcionar un buen ambiente de crecimiento de la flora microbiana y permitir la síntesis de las diferentes enzimas (Pandey et al., 2003). Dentro de los aspectos más importantes
*Autor para correspondencia: Adolfo Amador Mendoza
e-mail: fito_adamme@hotmail.com
Recibido: Febrero 28 de 2023
Aceptado: Enero 17 de 2024
Publicado: Febrero 27 de 2024
para la fermentación en sólido se encuentran: la selección del microorganismo y sustrato adecuado, optimización de parámetros del proceso, aislamiento y purificación del producto. Para la selección del sustrato hay que evaluar si se requiere un sustrato específico o si el objetivo es obtener un producto específico de un sustrato adecuado. Los parámet- ros del proceso y su optimización son importantes, así como ciertos parámetros fisicoquímicos y bioquímicos tales como: el tamaño de las partículas del sustrato, humedad inicial, pH y pretratamiento del mismo, humedad relativa, temperatura de incubación, agitación y aireación, edad y tamaño del in- óculo, la suplementación de nutrientes, fuente de carbono e inductores, extracción de producto y depuración (Cira, 2000; Pandey et al., 2003; Pacheco et. al., 2009; Peniche, 2006 y Ramirez et. al., 2009). Los ensilados biológicos se basan en la fermentación ácido-láctica y son un excelente producto proteínico de alto valor biológico que se ha empleado para la alimentación animal y se ha elaborado con diversas especies de crustáceos y desechos de peces (Vidotti, 2003). Algunas cepas de bacterias ácido-lácticas son capaces de degradar las aminas biogénicas empleando las amino-oxidasas, lo que reduce la concentración de ellas (Dapkevicius, et al., 2000), reduciendo así el crecimiento de hongos, bacterias pató- genas y responsables de la putrefacción; así la acidez de la fermentación permite la estabilidad de aminoácidos, como isoleucina, treonina, cistina, metionina y lisina, manteniendo valores similares a los de la harina de pescado (Viddotti et al., 2003), por lo que, estos ensilados pueden utilizarse como suplemento en dietas con base en harina de pescado como aporte de proteína para la nutrición acuícola. La fer- mentación en medio sólido de residuos de crustáceos y una producción de ácido láctico in situ por bacterias ácido lácticas inducen la licuefacción del residuo semisólido y se produce una disminución en el pH así como la activación de protea- sas que desproteinizan los residuos. Un efecto colateral de la fermentación en medio sólido es la producción de ácido láctico por la fermentación de carbohidratos, que conduce a una desmineralización de los residuos y una precipitación parcial de los iones de calcio como lactato de calcio (Xu et al., 2008; Gimeno et al., 2007). La fermentación del residuo de camarón resulta en un licor rico en proteínas, minerales y carotenoides (especialmente astaxantina), así como una fracción sólida rica en quitina. La fracción líquida puede ser utilizada como suplemento de proteínas y minerales para consumo humano o alimentación animal (Shirai et al., 2001; Cira et al., 2002; Bashkar et al., 2007). La utilidad de la preser- vación por medio de fermentación es debida a su naturaleza amigable, ecológicamente comparada con los métodos de preservación que involucran ácidos o bases, o el secado, que son ecológicamente agresivos y económicamente no viables (Bahskar et al., 2007). La fermentación del desperdicio para recuperar quitina, reemplaza considerablemente el proceso químico (Bahskar et al., 2007); sin embargo, para producir una quitina de calidad estándar, la proteína y minerales re- siduales de la quitina cruda deben ser removidos mediante tratamientos suaves con álcalis y ácidos (Cira et al., 2002; Sini
et al., 2007). También se ha reportado el uso de proteasas para la desproteinización de caparazones de crustáceos, que evitaría el tratamiento alcalino. Además de la aplicación de exoenzimas, algunas bacterias proteolíticas son usadas para la desproteinización de caparazones desmineralizados (Sini et al., 2007; Xu et al., 2008). Jung et al. (2005) realizaron la fermentación láctica para la desmineralización de los resid- uos de carapacho del cangrejo rojo utilizando Lactobacillus paracasei subesp. tolerans KCTC–3074. Diversas concentra- ciones de glucosa se adicionaron como una primera fuente de carbono y varias cantidades del cultivo bacteriano se inocularon como cultivo iniciador. Rao et al. (2000), deter- minaron los factores que afectan al Lactobacillus plantarum durante la fermentación de los desechos de camarón en la producción de quitina y licor de proteína. El objetivo de la fermentación fue posible por la secreción de proteasas y la reducción del pH, ésta se favoreció agregando ácido cítrico, en sustitución del ácido acético, incrementando con ello has- ta un 88% la desproteinización y a 90 % la desmineralización. El propósito del presente trabajo fue determinar los cambios en la composición química y microbiológica de micro ensi- lados de exoesqueletos de camarón (Litopeneus vanamei) y chapulín (Sphenarium purpurascens), durante el proceso de fermentación con un inoculo comercial de Lactobacillus plantarum AVG-112 como pretratamiento para la obtención de quitina cruda.
Para la realización de este proyecto se utilizaron dos fuentes quitinosas, la primera fueron desechos de chapulín (Sphena- rium purpurascens) adquiridos en la comunidad de Ocotlán en la ciudad de Oaxaca y la segunda, los desechos de camarón obtenidos en puntos de venta del centro de Tuxtepec, Oaxa- ca. Ambas muestras se congelaron a - 5 °C, posteriormente se molieron y tamizaron (No. 50) a un tamaño de partícula de 300 µm.
Se utilizó como fuente de carbono melaza de caña de azúcar (Ingenio Adolfo López Mateos, Tuxtepec, Oaxaca, México) que se adicionó en una proporción de 18 % (p/p) a los subs- tratos quitinosos (Ramírez-Ramírez et al., 2009; Amador et al., 2022).
El microorganismo probado para la fermentación fue la cepa ácido láctica comercial Lactobacillus. plantarum BG-112 (Raff, S.A. de C.V., grupo italiano Clerici-Sacco). Se realizó una cinética de crecimiento reactivándose en medio Man, Rogo- sa y Sharpe (MRS) incubándose a 38 °C por 2.5 h (Incubadora, marca: Felisa®, modelo: FE-132AD, México). Para la inocu- lación de cada uno de los desechos se consideró el valor de la velocidad específica de crecimiento (µ), calculada por la ecuación de Monod (Monod, 1949; Han y Levenspiel, 1988):
𝜇𝜇max 𝑆𝑆
homogeneizadas en una solución salina isotónica 0.09 % de
𝜇𝜇 =
𝐾𝐾𝑠𝑠
+ 𝑆𝑆
(1)
NaCl. El crecimiento microbiano fue determinado por conteo en placa de colonias usando medio de agar para métodos
Donde µmax es la máxima velocidad de crecimiento específico (0.198 h-1) y Ks es el parámetro de saturación del sustrato (g/l), también definido como la concentración de sustrato a la cual la velocidad µ es igual a la mitad de µmax.
Los desechos molidos se mezclaron con 18 % (p/p base hú- meda) de melaza, inoculándose posteriormente con 5 % (p/v base húmeda) de medio de cultivo man rogosa sharpe (MRS) con la cepa ácido láctica comercial. Se emplearon frascos de poliuretano de 30 mL con dimensiones de 5.5 cm de alto y
3.0 cm de ancho, llenados siguiendo el criterio geométrico y condiciones de fermentación establecidas por Ramírez-Ra- mírez (2009) resumidas en la Tabla 1. Por último, se incubaron a 30 °C durante intervalos de tiempo de 24, 48, 74, 96 y 120 h colocándose en una incubadora a 38 ± 1 °C (Cira et al., 2002).
Tabla 1.- Dimensiones y cantidad de carga de los microensilados de cama- rón y chapulín.
Table 1.- Dimensions and load quantity of shrimp and grasshopper micro- silages.
Muestra | Altura de llenado (cm) | Cantidad de mezcla (g) | Volumen ocupado (cm3) | Densidad aparente (g/ cm3) |
Camarón | 3.9 | 3.5 | 27.56 | 1.27 |
Chapulín | 3.9 | 4.0 | 27.0 | 1.15 |
La evaluación física del ensilado se realizó de acuerdo a Bertullo (1989) considerando las condiciones de olor, color y consistencia. Únicamente participaron 5 personas en la evaluación.
La fracción sólida se diluyó al 1 % (p/v) en agua destilada y se colocó en una parrilla con agitación magnética para medir el pH usando un potenciómetro (Orion 920A), inmediatamen- te después se determinó la acidez total titulable (ATT) con NaOH 0.1 N durante 120 h cada 24 h.
El contenido de humedad y cenizas, se determinaron em- pleando los métodos estándar (AOAC, 1990). El nitrógeno se determinó por el método Kjeldahl para proteína cruda (N x 6.25) y finalmente los carbohidratos se obtuvieron por diferencia. Los cálculos se hicieron en base húmeda y todas las determinaciones se hicieron por triplicado.
Se estudió la relación entre el crecimiento microbiano con respecto a la acidificación de los microensilados a las 120
h. Para formar diluciones decimales, las muestras fueron
estándar, man, rogosa y sharpe (MRS) y agar papa dextrosa (PDA) para: mesófilicos totales, coliformes totales, bacterias ácido lácticas (BAL) y cuenta total de hongos y levaduras, respectivamente (Borrás et al., 2020).
Para este análisis se utilizó un analizador de humedad de- nominado Aqualab PAWKIT® (Medidor de Actividad de Agua).
A los datos obtenidos de la evaluación de pH y porcentaje de ácido láctico durante el proceso de ensilado para las difer- entes proporciones de melaza, se les realizó una comparación de medias agrupadas con un análisis de varianza (ANDEVA) y una comparación con la prueba de Tukey para verificar si las diferencias fueron estadísticamente significativas (p < 0.05). Se utilizó el programa MINITAB® Versión 19 (Minitab Inc., State College, Pennsylvania, USA, 2020).
El ensilaje biológico requiere la adición de carbohidratos al- tamente fermentables para facilitar la acción de las bacterias lácticas, debido a que en el camarón y en el chapulín existen escasas cantidades de estos compuestos (Jay, 2000; Plascen- cia et al. 2002). Entre otras fuentes de carbono, la melaza de caña de azúcar ha sido la más utilizada para este propósito en concentraciones desde 5 hasta 40 % (Zahar et al., 2002). El porcentaje de humedad de la melaza, empleada fue de 23.11
± 0.01 %, el de las cenizas de 9.51 ± 0.02 %, el de proteínas de
4.25 ± 0.02 %, el pH 5.43 ± 0.01 y la actividad de agua (aw) de
0.67 ± 0.01. La concentración de la fuente de carbono fue de 18 % (p/p) para la fermentación de la mezcla de exoesquele- tos de camarón y chapulín. Como iniciador se utilizó la cepa Lactobacillus plantarum ABG- 112 y las muestras sin inóculo fueron usadas como control. La fermentación fue realizada en microsilos tipo frasco durante 120 h, considerando el valor de la velocidad específica de crecimiento para la fase exponencial (µmax) = 0.198 h-1 como se muestra en la Figura 1.
Las fermentaciones fueron realizadas en microsilos tipo fras- co durante 120 h con las dimensiones geométricas que se muestran en la Tabla 1.
En la Tabla 2 y 3, se presentan las características físicas del en- silado durante cinco días de fermentación, donde se observa que el color de los microensilados de camarón fue más claro (marrón claro) que los ensilados del chapulín, que fueron más oscuros (marrón oscuro), esto debido al color natural de la especie, teniendo en cuenta las proporciones de melaza. El olor indicó en ambos ensilados que son ácidos y ligeramente
400
6.50
350
6.00
300
5.50
250
5.00
200
4.50
150
Velocidad específica de crecimiento para la fase exponencial (µ) = 0.198 h-1
4.00
100
50
3.50
0
3.00
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32
TIEMPO (h)
Aritmetica
Logaritmica
Lineal (Logaritmica)
UFC / mL (10^6)
Figura 1.- Gráfica semilogarítmica de la concentración (UFC) de L. Plantarum AVG-112 en medio man rogosa sharpe (MRS) incubándose a 38 °C por 2.5 h. Figure 1.- Semilog graph of L. plantarum AVG-112 concentration (CFU) in man rogosa sharpe medium (MRS) incubating at 38 °C for 2.5 h.
Tabla 2.- Evaluación física de la calidad de los ensilados propuesta por Bertullo (2009), de acuerdo a sus características.
Table 2.- Physical evaluation of silages quality proposed by Bertullo (2009), according to their characteristics.
Atributo | Bueno | Regular | Inaceptable |
Olor | Ácido Suave | Picante Penetrante | Pútrido Rechazable |
Color | Amarronado Grisáceo Claro | Amarronado Claro- Oscuro, Grisáceo | Gris Oscuro Negruzco |
Consistencia | Líquido | Líquido Pastoso o Licuado | Pastoso |
Tabla 3.- Evaluación sensorial de la calidad de los microensilados biológicos elaborados a partir de desechos de camarón y chapulín.
Table 3.- Sensory evaluation of the quality of biological micro-silage made from shrimp and grasshopper waste.
Ensilado | Olor | Color | Consistencia |
Camarón | Dulce-Ácido con suave olor a Camarón | Marrón Claro | Pastosa con poco liquido en la base de la pasta |
Chapulín | Ácido- Ligeramente Picante | Amarronado Oscuro | Pastosa con poco liquido en la base de la pasta |
picantes, similares y agradables, sin ningún indicio de proce- so de descomposición lo cual coincide con los resultados de Vidotti et al. (2003) que encontró que los ensilados originan productos con características diferentes, atendiendo a la especie utilizada. Otro indicador es la consistencia, la cual fue pastosa en porque a pesar de que se observó presencia de líquido exudado y gas, la cantidad no era suficiente para darles una consistencia pastosa-líquida. Los microensilados presentaron color amarronado grisáceo claro y aroma dulce agradable con débil olor a camarón y chapulín, lo cual fue debido principalmente al efecto enmascarante de la melaza residual. Además, la actividad del inóculo pudo contribuir a la producción de compuestos aromáticos vía actividad proteolítica que mejora las propiedades sensoriales del pro- ducto (Terrones y Reyes, 2018). Estas características pueden
hacer atractivo el ensilado de pescado producido para ser aplicado en la formulación de dietas para animales.
CANTIDAD DE CELULAS (LOGARITMICA)
En las Tablas 4 y 5 se presentan los valores de actividad de agua (Aw), pH, % de acidez total titulable (ATT), % de humedad (H), % de cenizas y % de nitrógeno (N) a diferentes tiempos de fermentación (0, 24, 48, 74, 96 y 120 h) en los microensila- dos de exoesqueletos de ambos subproductos adicionados con 18 % de melaza (p/p) y 5 % (v/p) de L. Plantarum ABG-
112. Se encontró que la humedad fue ligeramente menor en los ensilados de camarón a las 24, 48, y 72 h, lo mismo que la concentración de proteínas, en comparación con los microensilados de chapulín. La proteína en el ensilado del camarón es aparentemente menor por el mayor contenido de humedad y las cenizas entre el material crudo y el ensi-
Tabla 4.- Valores de actividad de agua (Aw), pH, % acidez total titulable (ATT), % humedad (H), % cenizas y % nitrógeno (N) a diferentes tiempos de fermentación en microensilados de exoesqueletos de chapulín.
Table 4.- Water activity (Aw), pH, % total titratable acidity (ATT), % moisture (H), % ashes and % nitrogen (N) values at, different fermentation times in grasshopper exoskeletons micro silages.
Tiempo de fermentación Aw (h) 0 0.975 | pH 4.81 | %ATT 4.77 | %H 8.013 | % Cenizas 21.347 | % N 46.708 |
±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.02 | ±0.01 |
24 0.975 | 4.22 | 4.98 | 5.725 | 21.102 | 45.764 |
±0.01 | ±0.02 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.02 | ±0.01 |
48 0.97 | 4.21 | 5.07 | 3.996 | 19.989 | 40.934 |
±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 |
74 0.965 | 4.13 | 5.22 | 3.732 | 19.819 | 39.983 |
±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.02 | ±0.01 |
96 0.965 | 4.11 | 6.37 | 3.452 | 19.774 | 38.245 |
±0.02 | ±0.02 | ±0.01 | ±0.02 | ±0.02 | ±0.01 |
120 0.96 | 3.96 | 8.93 | 3.361 | 19.657 | 38.945 |
±0.01 | ±0.01 | ±0.02 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 |
Tabla 5.- Valores de actividad de agua (Aw), pH, % acidez total titulable (ATT), % humedad (H), % cenizas y % nitrógeno (N) a diferentes tiempos de fermentación (0, 24, 48, 74, 96 y 120 h) en microensilados de exoesqueletos de camarón.
Tiempo de fermentación Aw (h) | pH | %ATT | %H | % Ceni- zas | % N |
0 0.975 | 4.78 | 4.71 | 8.061 | 19.213 | 45.372 |
±0.02 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 |
24 0.975 | 4.56 | 5.98 | 5.389 | 19.112 | 42.862 |
±0.01 | ±0.01 | ±0.02 | ±0.02 | ±0.02 | ±0.03 |
48 0.970 | 4.45 | 6.07 | 3.997 | 18.898 | 38.769 |
±0.02 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 |
74 0.970 | 4.20 | 7.22 | 3.468 | 18.713 | 37.987 |
±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.03 | ±0.01 | ±0.01 |
96 0.965 | 4.19 | 8.6 | 3.360 | 18.594 | 36.919 |
±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.01 | ±0.03 | ±0.02 |
120 0.960 | 3.90 ±0.01 | 8.99 ±0.01 | 3.355 ±0.01 | 18.387 ±0.01 | 36.306 ±0.01 |
Table 5.- Water activity (Aw), pH, % total titratable acidity (ATT), % moisture (H), % ashes and % nitrogen (N) values, at different fermentation times (0, 24, 48, 74, 96 and 120 h) in shrimp exoskeletons micro silages.
±0.01
lado para ambas especies. El contenido de humedad inicial en el tiempo cero del ensilado del camarón y chapulín fue
8.061 ± 0.76 y 8.013 ± 0.77 %, respectivamente; en el ensilado de camarón, fue considerablemente mayor al reportado por Fagbenro et al. (1994), quienes obtuvieron valores de hume- dad de alrededor del 7.0 % y también superior al reportado por León (2003), quien obtuvo 5.62 % de humedad. Por otra parte, se observó que existió una disminución del contenido de nitrógeno en los ensilados de camarón y chapulín de 9.07 y 7.77 %, respectivamente, desde valores de 45.3721 ± 0.46 y 46.7088 ± 0.37 % (0 h) a 36.3061 ± 0.26 y 38.9453 ± 0.34 %
(120 h), respectivamente. Por lo tanto, se puede inferir que con la adición de inóculo se presenta una mayor actividad proteolítica en los ensilados de camarón, lo cual puede verse reflejado en un aumento de la digestibilidad de sus proteínas para ser aprovechadas más eficientemente en alimentación animal (Vidotti et al., 2003), Tal desproteinización se atribuye también a las enzimas presentes en el desecho de camarón, las cuales actúan sobre las proteínas, provocando la hidróli- sis y dando lugar a la producción de un lixiviado (Shirai et al., 1999). En los ensilados el extracto libre de nitrógeno se presentó un valor superior a la materia prima, lo que re- sulta de agregar melaza a los desechos para el proceso de fermentación (Vidotti et al., 2003; Ramírez et al., 2009). Una vez transcurridos los 5 días de fermentación, los microensi- lados de ambas fuentes presentaron una disminución en la producción de ácido láctico y, por lo tanto, un aumento en el pH. Esto se debió muy probablemente a la inhibición que pu- dieron sufrir las BAL por el aumento en la concentración de oxígeno durante el muestreo anterior, ya que, en la mayoría de los casos, la presencia de oxígeno suprime el desarrollo de las BAL, siendo mucho más eficiente el uso de oxígeno por microorganismos con una cadena respiratoria funcional para la producción de energía. Estos resultados fueron satis- factorios y permitieron demostrar la posibilidad de obtener un producto estable a tiempos cortos. La actividad de agua disminuyó considerablemente durante el proceso, de 0.975 al inicio hasta valores de 0.96 a los 5 d de fermentación para los dos microensilados, sin haber existido diferencia significa- tiva entre ellos (p > 0.05). Sin embargo, según lo establecen Madigan et al. (2003), en todos los ensilados los valores de Aw fueron importantes para la supervivencia de las BAL y
la inhibición de microorganismos dañinos, lo cual permitió
mantener estable el producto.
Los valores microbiológicos de los ensilados a las 120 h se presentan en la Tabla 6. El ensilado de camarón presentó valores de 132 × 106 UFC/g de bacterias mesófilas aerobias incubadas 48 ± 2 h y el ensilado de chapulín de 230 × 106 UFC/g. En la determinación de coliformes totales en placa, ambos ensilados mostraron ausencia, quedando dentro del límite máximo establecido por la Norma Oficial Mexicana (NOM-027-SSA1) (400 UFC/g). También se observó ausencia de mohos y Salmonella sp, esto sugiere que los microorganis- mos patógenos son inhibidos por el proceso de ensilaje. Por
Tabla 6.- Resultados de los análisis microbiológicos en los ensilados biológi- cos de los exoesqueletos de camarón y chapulín.
Table 6.- Results of the microbiological analyzes in the biological silages of shrimp and grasshopper exoskeletons.
Muestras | Aerobias Mesófilas (UFC/g) | Coliformes Totales (UFC /g) | Mohos y Levaduras (UFC /g) | Salmonella sp (UFC /g) |
Camarón | 132 × 106 | Ausente | Ausente | Ausente |
Chapulín | 230 × 106 | Ausente | Ausente | Ausente |
otra parte, se considera que la disminución en el valor de pH y la alta acidez favorece el desarrollo de los microorganismos ácido lácticos en los ensilados lo que se puede constatar por la disminución general de los coliformes y la ausencia de Salmonella al final del tiempo de fermentación; la incor- poración de sorbato de potasio es necesaria previniendo la contaminación del producto fermentado por levaduras que asimilan el ácido láctico.
Se demostró la posibilidad de reutilizar las dos fuentes de exoesqueletos para producir ensilados por fermentación en medio sólido. Este tratamiento biológico influyó en la desproteinización y desmineralización de ambas fuentes. El camarón fue el sustrato que mejor se desproteinizó y des- mineralizó en comparación con el chapulín. Los resultados obtenidos demuestran la importancia de los desechos de crustáceos, que pueden ser transformados mediante fer- mentación ácido láctica en ensilados, adquiriendo alto valor agregado y minimizando los problemas de impacto ambien- tal y pueden utilizarse como suplemento parcial de la harina de pescado en dietas prácticas en general. Las condiciones microbiológicas de los ensilados indican que la fermentación de estos desechos es inocua y puedan emplearse como insu- mos en dietas para para alimentación animal.
Los autores agradecen a la Universidad del Papaloapan (UNPA) y al Consejo Nacional de Humanidades Ciencias y Tecnologías (CONAHCYT) por el financiamiento del proyecto.
Los autores declaramos no tener conflicto de interés.
Amador, M. A., Juárez, J. M., Hernández, H., Ramírez, L. P., Huerta, S., Herman, E. y Rodríguez, M. J. 2022. Evaluación de procesos combinados: purificación de quitina a partir de exoesqueletos de camarón (Penaeus sp) y chapulín (Sphenarium purpurascens). Tropical and Subtropical Agroecosystems, 102: 1-12.
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