Revista de Ciencias Biológicas y de la Salud http://biotecnia.unison.mx
Universidad de Sonora
ISSN: 1665-1456
Artículo original
Seed germination and in vitro propagation of pitahaya (Hylocereus undatus)
1 Tecnológico Nacional de México/IT de Tuxtla Gutiérrez, División de Estudios de Posgrado e Investigación, Carretera Panamericana km. 1080,Tuxtla Gutiérrez, Chiapas, C.P. 29050, México.
Hylocereus undatus, commonly known as dragon fruit or pi- tahaya, is a species of climbing cactus belonging to the Cac- taceae family. This cultivar has gained worldwide popularity due to its striking appearance, sweet and exotic flavor. Fur- thermore, antioxidant, vitamin, and mineral content makes it a valuable crop of great economic importance in various tropical and subtropical regions of the world. Therefore, the aim of this research was to evaluate different protocols for seed disinfection and in vitro propagation of Hylocereus un- datus. Seeds were extracted from ripe fruits and disinfected with 50 % (v/v) NaClO and 70 % (v/v) ethanol, with varying immersion times. For germination, the disinfected seeds were planted in 50 % Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 30 g/L of sucrose and 2.5 g/L of phytagel. Stem, hypocotyl, and cotyledon explants were subsequently used for shoot induction, along with growth regulators such as naphthaleneacetic acid (NAA), benzylaminopurine (BAP), and 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) at concentrations of 0 and 2 mg/L. In the disinfection phase, the results showed that protocol 2, which used 50 % (v/v) NaClO for 10 minutes of immersion, induced 100 % disinfection and 85 % germi- nation. For shoot induction, treatments supplemented with naphthaleneacetic acid and benzylaminopurine were obser- ved to induce shoot formation in stem explants. The highest number of shoots (15.11) was obtained with 2 mg/L of BAP. Finally, in vitro plant acclimation to greenhouse conditions resulted in a 90 % survival rate using peat moss and perlite as substrates. These findings highlight the effectiveness of the protocol designed for the in vitro propagation of Hylocereus undatus, potentially contributing to commercial production. Keywords: Disinfection, Germination, Organogenesis, Accli- matization.
Hylocereus undatus, comúnmente conocido como fruta del dragón o pitahaya, es una especie de cactus trepador perteneciente a la familia Cactaceae. Este cultivo ha ganado popularidad a nivel mundial debido a su apariencia llamati- va, su sabor dulce y exótico. Además, su contenido de anti- oxidantes, vitaminas y minerales, lo convierte en un cultivo valioso y de gran importancia económica en diversas regio-
*Autor para correspondencia: José Alfredo Santiz-Gómez Correo-e: jose.sg@tuxtla.tecnm.mx
Recibido: 10 de junio de 2025
Aceptado: 4 de julio de 2025
Publicado: 13 de agosto de 2025
nes tropicales y subtropicales del mundo. Por ello, el objetivo de esta investigación fue evaluar diferentes protocolos para la desinfección de semillas y la propagación in vitro de Hylo- cereus undatus. Las semillas se extrajeron de frutos maduros, fueron desinfectadas con NaClO al 50 % (v/v) y etanol al 70
% (v/v), variando los tiempos de inmersión. Para la germina- ción, las semillas desinfectadas se establecieron en medio Murashige y Skoog (MS) al 50 % de sales, suplementado con 30 g/L de sacarosa y 2.5 g/L de fitagel. Posteriormente, para la inducción de brotes se emplearon explantes de tallos, hipocótilos, cotiledones y reguladores de crecimiento como ácido naftalenacético (ANA), bencilaminopurina (BAP) y áci- do 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D) en concentraciones de 0 y 2 mg/L. Con respecto a la desinfección los resultados mostra- ron que el protocolo 2 donde se empleó NaClO al 50 % (v/v) durante 10 min de inmersión, indujo 100 % de desinfección y 85 % de germinación. En la inducción de brotes se observó que los tratamientos suplementados con ácido naftalenacé- tico y bencilaminopurina indujeron la formación de brotes en explantes de tallos, el mayor número de brotes (15.11) se obtuvo con 2 mg/L de BAP. Finalmente, en la aclimatación de vitro plantas a nivel invernadero se logró una sobrevivencia del 90% empleando peat moss y perlita como sustratos. Es- tos hallazgos destacan la efectividad del protocolo diseñado para la propagación in vitro de H. undatus, contribuyendo potencialmente a su producción comercial.
La pitahaya o fruta del dragón (Hylocereus undatus) es una especie de cactus epífito nativa de América Central y del Sur (Esquivel y Araya-Quesada, 2012). Esta planta ha ganado interés mundial gracias a su fruta exótica, que cuenta con sabor dulce, refrescante y beneficios nutricionales, como su alto contenido de vitamina C, fibra, además de fenoles y flavonoides los cuales tienen propiedades antioxidantes (Ibrahim et al., 2018). Esta especie es un cactus trepador con tallos suculentos de color verde brillante, con costillas ondulados y espinas pequeñas que se agrupan en areolas que pueden alcanzar varios metros de longitud (Calix et al., 2005). Esta planta es epífita, lo que significa que puede crecer
Volumen XXVII
DOI: doi.org/10.18633/biotecnia.v27.2366
sobre otros árboles, utilizando sus raíces aéreas para obtener nutrientes y agua del aire y la lluvia. Las flores son grandes, nocturnas (polinizadas por murciélagos y polillas nocturnas), muy vistosas, de color blanco y con un aroma agradable (Calix et al., 2005).
La pitahaya tiene una importancia económica debido a su alto valor en el mercado de frutas exóticas. Países como Vietnam, Israel y México son grandes productores y expor- tadores de esta fruta, generando altos ingresos a través de la venta tanto local como internacional (Ortiz-Hernández y Carrillo-Salazar, 2012). En países de la Unión Europea y Estados Unidos la demanda sigue en aumento debido a la tendencia hacia el consumo de alimentos saludables y exóticos (Morales-Castillo, 2021). El método tradicional de cultivo de Hylocereus undatus, basado en esquejes y semillas, presenta varios desafíos, como el tiempo prolongado que requieren las plantas para alcanzar la madurez y la variabi- lidad genética que puede afectar la calidad y consistencia de los frutos (Muñíz, 2018). Además, si no se mantienen los cuidados fitosanitarios necesarios, estos métodos son más susceptibles a enfermedades y plagas, debido a que estos pueden generar las condiciones ideales para el desarrollo y la propagación de enfermedades como la pudrición blanda del tallo y la antracnosis que son ocasionados por enterobacte- rias como Pectobacterium sp. y hongos como Colletotrichum gloesporiodes, respectivamente, lo que puede disminuir sig- nificativamente el rendimiento y la calidad de las cosechas (Ramírez-Delgadillo et al., 2011; Valencia-Botín et al., 2013).
La propagación in vitro de especies vegetales en condi- ciones estériles mediante el cultivo de tejidos, la inducción de organogénesis directa o indirecta y la aplicación de regu- ladores de crecimiento vegetal representa una de las herra- mientas biotecnológicas que permite producir plantas de in- terés. Esta metodología tiene un interés creciente debido a su capacidad para generar clones de la planta madre o donante, asegurando un alto grado de uniformidad genética. Además, permite la producción masiva de plantas en cortos periodos de tiempo. Posteriormente, las plántulas obtenidas pueden ser evaluadas para seleccionar aquellas con uniformidad en tamaño, forma, color y velocidad de crecimiento, aspectos clave para el establecimiento de plantaciones comerciales. Otro beneficio significativo de la propagación in vitro es la capacidad de evitar enfermedades y plagas comunes en los métodos de cultivo tradicionales, mejorando así la calidad y el rendimiento del cultivo (Muñiz, 2018). Sin embargo, en el caso del género Hylocereus, se ha identificado que la desinfección de semillas es un paso crítico en el cultivo in vitro, ya que las características fisiológicas de sus estructuras dificultan la efectividad de las soluciones desinfectantes. Por este motivo, a menudo se prefiere trabajar con explantes ob- tenidos de plántulas in vitro (Winson et al., 2020). Por lo que,
Los frutos maduros de Hylocereus undatus, se obtuvieron del rancho “Las Pitahayas” ubicado en el municipio de Suchiapa, Chiapas (16° 45’ 39.23” latitud N y 93° 07’ 38.23” longitud O), los cuales se cosecharon entre los 35 y 45 días después de la fructificación. Posteriormente, la investigación se realizó en el laboratorio de cultivo de tejidos vegetales del Tecnológico Nacional de México, campus Tuxtla Gutiérrez, Chiapas.
Las semillas se extrajeron de frutos maduros, utilizando pin- zas de disección, obteniendo un total de 720 semillas, estas fueron colocadas en un frasco de vidrio y almacenadas de acuerdo con Mc Caughey-Espinoza et al. (2018). Posterior- mente, las semillas fueron separadas de forma aleatoria en cuatro grupos de 180 semillas, las cuales se dividieron según el protocolo de desinfección a evaluar. Para la desinfección de las semillas de Hylocereus undatus se evaluaron cuatro protocolos en una campana de flujo laminar:
Protocolo 1: Las semillas fueron sumergidas, bajo agi- tación constante, en una solución de etanol al 70 % (v/v) durante 10 min. Posteriormente, se realizaron tres lavados con agua destilada estéril durante tres minutos cada uno.
Protocolo 2: Las semillas se sumergieron, bajo agitación constante, en una solución de NaClO al 50 % (v/v) durante 10 minutos. Posteriormente, se realizaron tres lavados con agua destilada estéril durante tres min cada uno.
Protocolo 3: Las semillas fueron sumergidas, bajo agita- ción constante, en una solución de etanol al 70 % (v/v) duran- te 5 min. Posteriormente, se realizaron tres lavados con agua destilada estéril durante tres min cada uno. Finalmente, las semillas fueron sumergidas en una solución de NaClO al 50 % (v/v) durante 10 min y después de este tiempo se realizaron tres lavados con agua destilada estéril durante tres min cada uno.
Protocolo 4: Las semillas fueron sumergidas, bajo agita- ción constante, en una solución NaClO al 50 % (v/v) durante 15 min. Posteriormente, se realizaron tres lavados con agua destilada estéril durante tres min cada uno.
Una vez realizados los protocolos de desinfección, se colocaron 5 semillas en frascos de cultivo con medio MS (Mu- rashige y Skoog, 1962) al 50 % de sales, suplementado con 30 g/L de sacarosa y 2.5 g/L de fitagel, el pH se ajustó a 5.7 y se incubaron en una cámara bioclimática a una temperatura de 23±2 °C, con un fotoperiodo de 16 h a una intensidad lumínica de 35 µmol m2s-1. Después de 30 d, las variables de respuesta evaluadas fueron el porcentaje de desinfección y el porcentaje de germinación obtenidos con la ecuación 1 y 2, respectivamente.
el objetivo de esta investigación fue establecer un protocolo de propagación in vitro para Hylocereus undatus, que incluya una metodología efectiva de desinfección de semillas, así como procesos de multiplicación y aclimatación.
Desinfección (%) = (𝑁𝑁−𝑛𝑛) ∗ 100
𝑁𝑁
Donde:
N= número total de semillas empleadas. n= número de semillas contaminadas.
(1)
Germinación (%) =
Donde:
(𝐴𝐴−𝐵𝐵)
𝐴𝐴
∗ 100
(2)
plántulas fueron sembradas en recipientes de polietileno de 500 mL que contenían Perlita y Peat moss®, en una relación de 2:1 respectivamente, como sustrato. A los recipientes se les colocó una cubierta de polietileno de 1000 mL, para
A= número total de semillas empleadas. B= número de semillas germinadas.
Después de 90 días de crecimiento, las vitro plántulas obte- nidas se emplearon como material vegetal para la inducción de brotes. Para ello, se evaluaron explantes de cotiledón, hipocótilo y tallo, los cuales se establecieron en medio MS al 100 % de sales, suplementado con 30 g/L de sacarosa,
2.5 g/L de fitagel, con los reguladores de crecimiento ácido naftalenacético (ANA), bencilaminopurina (BAP) y ácido 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D) a concentraciones de 0 y 2 mg/L (Tabla 1), el pH se ajustó a 5.7 y finalmente se incubaron en cámara bioclimática a una temperatura de 23±2 °C, con un fotoperiodo de 16 h a una intensidad lumínica de 35 µmol m2s-1. Cada unidad experimental contenía 4 explantes y cada tratamiento se realizó por triplicado. En el tratamiento con- trol, los explantes se cultivaron en medio MS sin reguladores de crecimiento vegetal. Después de 60 días de incubación, la variable de respuesta evaluada fue el número de brotes por explante.
Después de 60 días, los brotes obtenidos fueron subculti- vados en frascos de cultivo con medio MS al 50% de sales, suplementado con 30 g/L de sacarosa y 2.5 g/L de fitagel. Se incubaron en una cámara bioclimática a una temperatura de 23±2 °C, con un fotoperiodo de 16 h a una intensidad lumí- nica de 35 µmol m2s-1. Después de 30 días de incubación, las plántulas completamente enraizadas fueron retiradas de los frascos y se lavaron con agua corriente del grifo, eliminando el medio de cultivo adherido a las raíces. Posteriormente, las plántulas fueron sumergidas en una solución de Captan y Agrimycin® al 2 % (p/v), durante 10 min con agitación constan- te como método preventivo contra microorganismos (Santiz et al., 2012; Valencia-Botín et al., 2013). Posteriormente, las
Tabla 1. Combinación de reguladores de crecimiento vegetal para la inducción de brotes en explantes de Hylocereus undatus.
Table 1. Combination of plant growth regulators for shoot induction in
Hylocereus undatus explants.
Tratamiento | Regulador de crecimiento (mg/L) | ||
ANA | BAP | 2,4-D | |
T1 | 0 | 0 | 0 |
T2 | 2 | 0 | 0 |
T3 | 0 | 2 | 0 |
T4 | 2 | 2 | 0 |
T5 | 0 | 0 | 2 |
T6 | 2 | 0 | 2 |
T7 | 0 | 2 | 2 |
T8 | 2 | 2 | 2 |
evitar la pérdida de humedad por evaporación. Las plántulas se mantuvieron en invernadero al 50 % de iluminación con malla sombra, se mantuvo una humedad relativa mayor al 75
% y una temperatura de 26.5 ±3 °C. Las cubiertas de polieti- leno fueron retiradas después de 15 días. Se aplicaron 50 mL de agua destilada por planta cada semana. Después de 30 días de crecimiento se evaluó el porcentaje de supervivencia.
Los experimentos se llevaron a cabo bajo un diseño experi- mental multifactorial con tres repeticiones por cada unidad experimental. En donde, los factores evaluados fueron los reguladores de crecimiento, ácido naftalenacético (ANA), bencilaminopurina (BAP) y ácido 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D) y los niveles empleados fueron las concentraciones de 0 y 2 mg/L. Se realizó un ANOVA simple para determinar los efectos de las interacciones entre los niveles de los factores y un ANOVA multifactorial para establecer el efecto de cada factor y cada nivel. Las medias se compararon mediante la prueba Tukey (p≤0.05) con la ayuda del software estadístico Statgraphics Centurion versión XVII.
Con respecto a la desinfección de semillas, los protocolos 2, 3 y 4 lograron mantener el 100 % de asepsia en el medio de cul- tivo, en contraste con el protocolo 1, donde se alcanzó 81.48
% de desinfección (Tabla 2). Sin embargo, este porcentaje de desinfección sigue siendo efectivo, lo cual podría deberse a la facilidad con que las soluciones desinfectantes pueden alcanzar toda la superficie de la semilla, dado su superficie lisa y sin poros. Estos resultados concuerdan con los repor- tados por Kasim et al. (2016), quienes evaluaron el efecto del
Tabla 2. Efecto del protocolo de desinfección sobre la germinación de semillas de Hylocereus undatus.
Table 2. Effect of the disinfection protocol on Hylocereus undatus seeds
germination.
Protocolo de desinfección | Desinfección (%) | Germinación (%) | |
T1 | Etanol 70 % (v/v) por 10 min | 81.48 ± 19.34 b | 29.4 ±4.6 c |
T2 | NaClO al 50 % (p/v) por 10 min | 100± 0.0 a | 85.0 ±4.0 a |
T3 | Etanol 70 % (v/v) por 5 min + NaClO al 50% (p/v) por 10 min | 100± 0.0 a | 37.2 ±3.2 c |
T4 | NaClO al 50 % (p/v) por 15 min | 100± 0.0 a | 66.7 ±3.6 b |
DMS | 10.68 | 3.32 | |
Las letras diferentes indican diferencias estadísticamente significativas entre cada uno de los tratamientos (p ≤ 0.05).
Different letters indicate statistically significant differences between each treatment (p ≤ 0.05).
potencial del medio MS y la concentración de la solución desinfectante de NaClO sobre el porcentaje de desinfección y germinación, en donde obtuvieron el 99 % de germinación con una solución al 5.25 % de NaClO. Se ha reportado que el uso de lejía doméstica o cloro comercial local que contenga un 3.5 % (p/v) de hipoclorito de sodio sobre la desinfección de explantes, es uno de los métodos más simples, eficaces y económicos. De acuerdo con Oyebanji et al. (2009), una solución de NaClO al 3.5 % (p/v) es eficaz como esterilizante sobre la superficie de semillas de Oryza sativa y Sorghum bicolor, produciendo el mayor porcentaje de desinfección bacteriana y fúngica del 100 % durante una exposición de 20 a 45 min.
Después de 14 días de la desinfección de las semillas y el establecimiento en el medio de cultivo, el mayor porcentaje de germinación fue de 85.0 % (p≤0.05) cuando las semillas se trataron con NaClO durante 10 min (protocolo 2), el cual tuvo diferencia estadísticamente significativa con respecto a los demás tratamientos, mientras que las semillas tratadas con etanol al 70 % durante 10 min (protocolo 1) presentaron un 29.6 % de germinación (Tabla 2). Estos resultados son similares a los obtenidos por Kasim et al. (2016), quienes obtuvieron un 99 % de germinación en semillas de Hylo- cereus polyrhizus después de dos semanas posteriores a la desinfección utilizando una solución al 0.788 % de NaClO durante 15 min. Por otra parte, se observó que los protocolos en donde se empleó exclusivamente NaClO al 50 % (v/v), dis- minuyó el porcentaje de germinación del 85.2 % (protocolo 2) hasta el 66.7 % (protocolo 4) a medida que aumentaba el tiempo de inmersión de las semillas, durante 10 y 15 minutos de inmersión, respectivamente. Este efecto negativo en la germinación por el incremento del tiempo de exposición, de acuerdo con Oyebanji et al. (2009) puede ser ocasionado por el NaClO que es un agente oxidante fuerte y su acción puede resultar tóxica para las semillas si se les expone por un período prolongado. A medida que aumenta el tiempo de inmersión en NaClO, la concentración de cloro activo en contacto con la semilla aumenta, lo que puede dañar las membranas celulares, el tejido interno de la semilla o las estructuras germinativas como el embrión, reduciendo su viabilidad y capacidad de germinar. En cuanto al protocolo 3, en el cual empleó etanol al 70 % (v/v) así como NaClO al 50 % (v/v), se obtuvo un porcentaje de germinación del 37
%. Estos resultados son correspondientes a los obtenidos por Sheng et al. (2016), quienes evaluaron un protocolo de desinfección que consistía en el empleo de dos soluciones desinfectantes (etanol al 70 %, Clorox® al 1 % y Tween 20) en semillas de Hylocereus costaricensis.
De acuerdo con Quiala et al. (2009), las semillas de Hylo- cereus undatus al ser de tamaño pequeño (≈ 2 mm y ≈0.003 g en masa fresca) con una textura dura y plana, limitan la super- ficie de adherencia de los microorganismos y por otra parte facilita el buen contacto en la testa y la desinfección. Durante
la formación de las semillas, los embriones y los tejidos aso- ciados tienden a excluir patógenos y materiales extraños que pueden estar en la planta madre a través de la migración pasiva. Por lo tanto, las semillas de frutos libres de insectos y enfermedades, permiten el fácil establecimiento de plantas asépticas, que pueden servir como material experimental (Mineo, 1990). Por ello, es importante el empleo de semillas como material vegetal ya que al germinar bajo condiciones in vitro permiten la inducción de callos, la regeneración de múltiples brotes y otros procesos morfogénicos importantes en la producción de metabolitos (Kasim et al., 2019; Reyes- Martínez et al., 2019). Por otro lado, el requerimiento de nutrientes no se considera esencial durante la germinación, por lo que la concentración de sales en el medio MS puede reducirse para incrementar la germinación de las semillas y evitar problemas de hiperhidricidad. Los resultados obteni- dos en la germinación de las semillas Hylocereus undatus son correspondientes a lo reportado utilizando el medio MS al 50
% de sales en especies como Hylocereus polyrhizus (Kasim et al., 2016) e Hylocereus costaricensis (Mahmod et al., 2021).
Después de 60 días, los explantes de tallos indujeron el mayor número brotes (15.11) cuando se empleó 2 mg/L de BAP mostrando diferencia estadística significativa (p≤0.05) comparado con los demás tratamientos (Figura 1C). De igual forma, los explantes de tallos presentaron la formación de brotes cuando se empleó la combinación de ANA y BAP a 2 mg/L (Figura 1D), pero el número de brotes se redujo cuando se empleó únicamente 2 mg/L de ANA (Figura 1B). Mientras que los explantes de cotiledón indujeron brotes únicamente cuando se empleó 2 mg/L de ANA (Figura 1A). Finalmente, los explantes de hipocótilos no indujeron brotes en ninguno de los tratamientos evaluados y el empleo de 2,4-D no mos- tró respuesta en la regeneración de brotes en ningún tipo de explante (Tabla 3). Estos resultados son correspondientes a lo reportado en especies de cactáceas como Opuntia ficus- indica donde el balance auxina-citoquinina juega un papel importante en la inducción de brotes mediante organogéne- sis directa (Bougdaoua y El Mtili, 2020), así como el empleo de ANA y BAP para incrementar la inducción de brotes en cactáceas (Rodríguez y Ramírez-Pantoja, 2020). Finalmente, también se ha reportado el incremento en la inducción de brotes en cactáceas cuando se emplea únicamente BAP a concentraciones elevadas (El Finti et al., 2010), lo que corro- bora los resultados obtenidos en Hylocereus undatus, donde la adición de BAP también mostró una eficacia significativa- mente mayor en la regeneración de brotes en explantes de tallo.
La aclimatación es una etapa crítica en la propagación, donde las plántulas deben adaptarse a condiciones ex vitro. En este estudio se obtuvo una tasa de supervivencia del 90
% después de 30 d iniciada la aclimatación (Figura 2). Estos
A B
C D Figura 1. Efecto de los reguladores de crecimiento
sobre la inducción de brotes en Hylocereus undatus.
explante de cotiledón con 2 mg/L de ANA, B) explante de tallo con 2 mg/L de ANA, C) explante de tallo con 2 mg/L de BAP y D) explante de tallo con 2 mg/L de ANA y BAP. Barra de escala= 3 cm. Figure 1. Effect of growth regulators on shoot induction in Hylocereus undatus. A) cotyledon explant with 2 mg/L of ANA, B) stem explant with 2 mg/L of ANA, C) stem explant with 2 mg/L of BAP and D) stem explant with 2 mg/L of ANA and BAP. Scale bar= 3 cm.
Tratamiento | Número de brotes | |||
Tipos de explantes | ||||
Cotiledón | Hipocótilo | Tallo | ||
T1 | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | |
T2 | 2.66 ±1.41 b | 0 ± 0.0 d | 0.33±0.70 c | |
T3 | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | 15.11± 5.25 a | |
T4 | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | 5.44± 1.81 b | |
T5 | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | |
T6 | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | |
T7 | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | |
T8 | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | 0 ± 0.0 d | |
DMS | 0.371 | |||
Tabla 3. Efecto de los reguladores de crecimiento vegetal sobre la inducción de brotes en explantes de cotiledón, hipocótilo y tallo de Hylocereus undatus. Table 3. Effect of plant growth regulators on shoot induction in cotyledon, hypocotyl and stem explants of Hylocereus undatus.
Las letras diferentes indican diferencias estadísticamente significativas entre cada uno de los tratamientos (p ≤ 0.05).
Different letters indicate statistically significant differences between each treatment (p ≤ 0.05).
resultados son correspondientes a lo reportado por Viñas et al. (2012) en Hylocereus costaricensis, donde las plántulas tra- tadas con un régimen de aclimatación similar mostraron una tasa de supervivencia del 96 %. Esto sugiere que los métodos de aclimatación empleados, incluyendo el uso de Perlita y Peat moss® como sustrato y el tratamiento con Captan y Agrimycin®, son efectivos para asegurar la supervivencia de las plántulas en condiciones ex vitro. Además, uno de los fac- tores importantes durante la aclimatación de especies con metabolismo CAM es la presencia endógena de auxinas lo que promueve la inducción de raíces de forma espontánea sin la adición de reguladores de crecimiento e incrementa
Figura 2. Plántulas de Hylocereus undatus después de 30 días de aclimatación a nivel invernadero.
Figure 2. Hylocereus undatus plants after 30 days of acclimatization in a greenhouse.
la asimilación de nutrientes durante la aclimatación a nivel invernadero (Santiz et al., 2012).
El empleo de NaClO al 50 % (v/v) durante 10 min incrementó el porcentaje de desinfección y germinacion de semillas de Hylocereus undatus, lo que permitió el establecimiento de cultivos asépticos para la propagación in vitro. Así mismo, los tallos Hylocereus undatus mostraron la mejor respuesta en la regeneración de brotes, ya que, con la adición de reguladores de crecimiento, especialmente BAP a 2 mg/L, incremento la formación de brotes, por el contrario, el 2,4-D no fue relevante en la inducción de brotes en esta especie. Finalmente, el pro- ceso de aclimatación desarrollado, demostró ser eficaz, con una tasa de supervivencia del 90 % en condiciones ex vitro a nivel invernadero. La implementación de la propagación in vitro tiene el potencial de satisfacer la creciente demanda de la pitahaya en el mercado global y la conservación del mate-
rial fitogenético de esta especie, contribuyendo al desarrollo económico de los países productores.
Los autores agradecen al Consejo Nacional de Humanidades, Ciencias y Tecnologías (CONAHCYT) por otorgamiento de la beca de maestría a EJSG para realizar esta investigación. También agradecemos al Tecnológico Nacional de México por brindar el apoyo financiero del proyecto con la clave 17547.23-P.
Los autores de este trabajo declaran no tener ningún conflic- to de interés.
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