EFECTO DE LA LUZ ROJA Y EL CONTENIDO DE NUTRIENTES SOBRE LA EMBRIOGÉNESIS SOMÁTICA, ENRAIZAMIENTO Y ACLIMATACIÓN A SUELO DE PLANTAS DE PAPAYA MARADOL

Authors

  • Gilber Vela-Gutiérrez Laboratorio de Inv. y Desarrollo de Productos Funcionales. Facultad de Ciencias de la Nutrición y Alimentos. Universidad de Ciencias y Artes de Chiapas. Libramiento Norte Poniente 1150. Ciudad Universitaria. Col. Lajas Maciel
  • Erika Judith López Zúñiga Laboratorio de Inv. y Desarrollo de Productos Funcionales. Facultad de Ciencias de la Nutrición y Alimentos. Universidad de Ciencias y Artes de Chiapas. Libramiento Norte Poniente 1150. Ciudad Universitaria. Col. Lajas Maciel
  • Esmeralda García Parra Laboratorio de Inv. y Desarrollo de Productos Funcionales. Facultad de Ciencias de la Nutrición y Alimentos. Universidad de Ciencias y Artes de Chiapas. Libramiento Norte Poniente 1150. Ciudad Universitaria. Col. Lajas Maciel
  • Elizabeth León García Unidad de Investigación y Desarrollo en Alimentos (UNIDA), Instituto Tecnológico de Veracruz. Av. Miguel Angel de Quevedo 2779, Col. Formando Hogar, 91897 Veracruz, Ver
  • Oscar Andrés Del Angel Coronel Instituto Tecnológico Superior de Huatusco. Av. 25 Poniente No. 100, Col. Reserva Territorial. Huatusco, Veracruz, México, C.P. 94100
  • Arturo A. Velázquez López Laboratorio de Inv. y Desarrollo de Productos Funcionales. Facultad de Ciencias de la Nutrición y Alimentos. Universidad de Ciencias y Artes de Chiapas. Libramiento Norte Poniente 1150. Ciudad Universitaria. Col. Lajas Maciel

DOI:

https://doi.org/10.18633/biotecnia.v21i1.818

Keywords:

Papaya Maradol, luz roja, estrés osmótico, Polietilenglicol (PEG), enraizamiento

Abstract

El objetivo del presente trabajo fue evaluar el efecto de la luz roja y la composición del medio de cultivo sobre la embriogénesis somática y enraizamiento de papaya Maradol. De siete a ocho embriones se colocaron dentro de una caja Petri con medio de cultivo embriogénico (MEmb). Las cajas se incubaron en obscuridad proveyéndoles de luz roja (0, 1 y 2 h al día). En cada tratamiento se evaluó: el tiempo de aparición de embriones, la calidad y cantidad de estos. Los embriones se subcultivaron en medio para la generación de plántulas (G4), se probaron diferentes medios de cultivo para enraizamiento (ME1, ME2, ME3 y ME4). Se obtuvieron embriones somáticos al mes y medio de colocar el cigoto en MEmb con 6% de sacarosa, 1 mg/L de 2,4- ácido dicloro fenoxiacético (2,4-D) y expuestos a 2 h de luz roja, mientras el control requirió de tres meses (p<0.05). La mayor inducción de raíces en las plantas ocurrió cuando se utilizó en el medio de cultivo un gradiente descendiente de la concentración de ácido indol butírico (AIB) y del tiempo de exposición. Estos resultados indican una interacción positiva entre el estrés producido por la sacarosa y el 2,4-D, así como la exposición a la luz roja, lo que induce mayor velocidad de embriogénesis.

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References

Cabrera-Ponce, J.L., Vegas-Garcia, A., Herrera-Estrella, L. 1995. Herbicide resistant transgenic papaya plants produced by an efficient particle bombardment transformation method. Plant Cell Reports. 15:1-7.

Cai, W., Gonsalves, C., Tennant, P. Fermin, G., Souza, M., Sarindu, N., Jan, F.J., Zhu, H.Y. Gonsalves, D. 1999. A protocol for efficient transformation and regeneration of Carica papaya L. In Vitro Cellular & Developmental Biology- Plant. 35:61-69.

Chen, X., Yang, Q., Song, W., Wang, L., Xue, X. 2017. Growth and nutritional properties of lettuce affected by different alternating intervals of red and blue LED irradiation. Scientia Horticulturae. 223: 44-52.

Demotes-Mainard, S., Péron, T., Corot, A., Bertheloot, J., Le Gourrierec, J., Pelleschi-Travier, S., Crespel, L., Morel, P., Huché-Thélier, L., Boumaza, R., Vian, A., Guérin, V., Leduc, N., and Sakr, S. 2016. Plant responses to red and far-red lights, applications in horticulture. Environ. Exp. Bot. 121:4-21.

https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2015.05.010. Esna-Ashari, M. y Viliers, T.A. 1998. Plant regeneration from tuber discs of potato (Solanum tuberosum L.) using 6-benzylaminopurine (BAP). Potato Research 41:371-382.

Fakuda, N., Ajima, C., Yukawa, T., Olsen, J. 2016. Antagonistic action of blue and red light on shoot elongation in petunia depends on gibberellin, but the effects on flowering are not generally linked to gibberellin. Enviromental and Experimental Botany. 121:102-111.

Furtado, A., Vinicius, M., Shwartz, E., Salgueiro, C., Apparecida, M. 2011. The effect of light quality on leaf production and development of in vitro- cultured plants of Alternanthera brasiliana Kuntze. Enviromental and Experimental Botany. 70: 43-50.

Gang, M., Lancui, Z., Masaya, K., Kazuki, Y., Yoshikazu, K., Masaki, Y., Yoshinori, I., Hikaru, M. 2015. Effect of the combination of ethylene and red LED light irradiation on carotenoid accumulation and carotenogenic gene expression in the flavedo of citrus fruit. Posthaervest Biology and Technology. 99: 99-104.

Gutiérrez-Rosati, A., Jiménez, C. and Yepez, J. Embriogénesis somática en papayo (Carica papaya L.) variedad PT-101-B. Universidad Nacional Agraria La Molina. Perú. [Consultado 30 de septiembre de 2012] 1999. Disponible en: http://www. lamolina.edu.pe/cirgebb/papayo%20embriogenesis%201999.pdf

Ilieva, I., Ivanova, T., Naydenov, Y., Dandolov, I., Stefanov, D. 2010. Plant experiments with light-emitting diode module in Svet space greenhouse. Advances Space. 46:840–845.

Indacochea, B., Parrales, J., Castro, C., Vera, M., Gabriel, J. 2017. Aclimatación in vitro de especies forestales nativas del Sur de Manabí en peligro de extinción. Journal of the Selva Andina 8(2): 124-134.

Islam, R., Rahman, S.M., Hossain, M. y Joarder, O.I. 1993. In Vitro clonal propagation of papaya (Carica papaya L.). Pakistan Journal of Botany. 25:189-192.

Kader, A.A. Department of Pomology, University of California, Davis, CA. [Consultado 25 de mayo de 2011] 2010. Disponible en: http//postharvest.ucdavis.edu/Produce/Pr oduce.

Kumari, A., Baskaran, P., Placková, L., Nemcaková, H., Nisler, J., Dolézal, K., Standen, J. 2017. Plant growth regulator interactions in physiological processes for controlling plant regeneration and in vitro development of Tulbaghia simmleri. Journal of Plant Physiology. 18:1606-1617.

Luciany, F. G., Mary, K. A., Pellegrini, C. y Curvetto, N.R. 2006. Effects of explants and growth regulators in garlic callus formation and plant regeneration. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 87:139-143.

Medeiros, A. S. M., Cabral, M. E., Mota, L. G. V., Willadino, L., Camara, T. 2015. Propagación in vitro en Sistemas de Inmersión Temporal de plantas de caña de azúcar variedad RB 872552’ obtenidas de embriones somáticos. Biotec Veg. 15(3): 187-191.

Mercier, H., Souza, B., Kraus, J., Hamasaki, R., Sotta, B. 2003. Endogenous auxin and cytokinin contents associated with shoot formation inleaves of pineapple cultured in vitro. Brazilian Journal Plant Physiologic. 15(2): 107-112.

Montes, S., Lalama, J., Echeverria, J., Salazar S. 2016. Factores bióticos y abióticos que influyen en la aclimatación de las vitroplantas en invernadero. Dominio de las Ciencias. 2: 63-89

Murashige, T. y Skoog, F. 1962. A revised medium for growth and bioassay with tabacco tissue culture. Physiologia Plantarum. 15:431-497.

Pinto, F., Berti, M., Olivares, D., Sierralta, W., Hinrichsen, P., Pinto, M. 2011. Leaf development, temperatura and light stress control of the expression of early light-inducible proteins (ELIPs) in Vitis vinifera L. Enviromental and Experimental Botany. 72: 278- 283.

Posada-Pérez, L., Padrón-Montesinos, Y., González-Olmedo, J., Barbón Rodriguez, R., Rodríguez-Sánchez, R., Norman-Montenegro, O., Carlos-Rodriguez, R., Dion-Daniels, E., & Gómez-Kosky, R. 2016. Effect of phloroglucinol on rooting and in vitro acclimatization of papaya (Carica papaya L. var. Maradol Roja). In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 52:196–203 DOI10.1007/s11627-015-9733.

Pradeep, C., Taylor, M., Harding, R., Tyagi, A., Becker, D. 2010. Initation of embriogenic cell suspensions of taro (Colocasia esculenta var. esculenta) and plant regeneration. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 100:283-291.

Quintana, S. M. E. 2009. Transformación genética de cebolla (Allium cepa L.) mediante biobalística. Tesis de Doctorado en Ciencias. Colegio de Posgraduados. México. 81p. Robin, Ch., Hay, M., Newton, P. 1994. Effect of light quality (red: far-red ratio) and defoliation treatments applied at a single phytometer on axillary bud outgrowth in Trifolium repens L. Oecología. 100: 236-242.

Rodríguez, A., Posada-Pérez, L., Kosky, R. C., Reyes, M., Tejeda, M. 2009. Aclimatización de plantas de Carica papaya var. Maradol roja obtenidas por embriogénesis somática. Biotec. Veg. 9(2): 91-97.

Saker, M. M., Bekheet, S. A., Taha, H.S. y Reda A. A. 1999. In vitro propagation of papaya (Carica papaya L.). Plant Cell and Tissue Culture Department, National Research Center. Cairo, Egypt.

Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera (SIAP). Producción agrícola de papaya (ciclo 2011). [Consultado 20 de febrero de 2018]. Disponible en: http://www.siap.gob.mx/index.phpoption=com_wrapper&view=wrapper&Itemid=351

Schuabb, H. A., Souza, R. R., Zanchetta, P. L., De Souza-Filho, G. A. y Santa-Catarina, C., Silveyra, V. 2017. Comparative proteomics analysis of the effect of combined red and blue lights on sugarcane somatic embryogenesis. Acta Physiol Plant. 52:1-14. DOI 10.1007/S11738-017-2349-1.

Vela-Gutiérrez, G., Del Angel-Coronel, O. A., Cabrera-Ponce, J. L., Gómez Lim, M. A., García-Galindo, H. S. Transformación de embriones de papaya maradol (Carica papaya L.) con el gen 9/13 de la lipoxigenasa. RIIIT. 4(22):1-14.

Warpeha, K. y Monrtgomery, B. 2015. Light and hormone interactions in the seeds-to-seedling transition. Environmental and Experimental Botany. Article in press.

Xiao, C., Chang, Y., Wen, S., Li, W., Wen, G., Xu, X. 2017. Growth and nutritional properties of lettuce affected by different alternating intervals of red and blue LED irradiation. Scientia Horticulturae. 223: 44-52.

Xue, X., Gang, Z., Ying, L., Ming, T., Wen W., Xue, H. 2013. Effects of light intensity on the growth and leaf development of young tomato plants grown under combination of red and blue light. Scientia Horticulturae. 153: 50-55.

Yang, F., Feng, L., Liu, Q., Wu, X., Fan, Y, Raza, M., Cheng, Y., Chen, J., Wang, X., Yong, T., Liu, W., Liu, J., Du, J., Shu, K., Yang, W. 2018. Effect of interactions between light intensity and redto-far-red ratio on the photosynthesis of soybean leaves under shade condition. Environmental and Experimental Botany. 150:79-87.

Ying, Z., Yu, X. y Davis, M. J. 1999. New method for obtaining transgenic papaya plants by Agrobacterium-mediated transformation of somatic embryos. Proceedings of the Florida State Horticultural Society. 112:201-205.

Published

2018-12-23

How to Cite

Vela-Gutiérrez, G., López Zúñiga, E. J., García Parra, E., León García, E., Del Angel Coronel, O. A., & Velázquez López, A. A. (2018). EFECTO DE LA LUZ ROJA Y EL CONTENIDO DE NUTRIENTES SOBRE LA EMBRIOGÉNESIS SOMÁTICA, ENRAIZAMIENTO Y ACLIMATACIÓN A SUELO DE PLANTAS DE PAPAYA MARADOL. Biotecnia, 21(1), 93–101. https://doi.org/10.18633/biotecnia.v21i1.818

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